Toma de muestra en animales silvestres

  Toma de muestra en primates  no humanos

TITÌ BEBÈ LECHE (SAGUINUS FUSCICOLLIS)

Protocolo para la toma de muestra

En los miembros pélvicos, las venas femorales son continuaciones de las venas poplíteas justo sobre la rodilla, corren sobre la cara interna de los muslos, junto con la arteria y nervios femorales, y son estos vasos los más empleados en venopunción en el caso de primates de menor tamaño. Más distal, la vena safena menor o lateral es empleada para obtener muestras de sangre, a la altura del muslo.

En primates pequeños, la toma de muestra es  generalmente  en la vena femoral .En el caso de primates de mayor tamaño como Papiones y  chimpancés, la punción puede realizarse  en  el antebrazo como en los seres humanos o en la cola en la vena  coccígea. En los brazos. Las venas humerales (sobre el aspecto anterior del codo) son uno de los puntos de acceso venoso más comunes, también puede emplearse la vena basílica (sobre el aspecto posterior del brazo)

 En casos excepcionales  puede ser intracardiaca, pero es bastante traumática y puede llevar a la muerte del animal. 

Para primates pequeños el volumen máximo de sangre para el hemograma es 1 ml.

Venas del brazo y la pierna en
primates pequeños

1. Tronco venoso braquicéfalico; 2.Vena yugular interna 3.Vena subclavia;  4.Vena axilar; 5.Vena cefálica;  6. Venas humerales; 7.Vena basílica;  8.Vena cubital 9.Vena radial ; a) vena cava posterior; b) Vena iliaca primitiva; c)Vena iliaca externa; d) Vena femoral; e) Vena safena externa o menor ; g) Vena poplítea; h)  Vena peronea; i) Vena tibial posterior; j) Vena tibial anterior.

En estos procedimientos es necesario anestesiar a los primates , ya que tienden a estresarse demasiado y el cuadro hemático cambia radicalmente, a lo que se denomina hemograma de stress. Ante una situación de stress, se libera gran cantidad de glucocorticoides como el  cortisol, la cortisona y la corticosterona, las cuales pueden alterar el hematocrito y  el recuento del cuadro blanco presentándose la triada de  Thorn (neutrofilia, eosinopenia, linfopenia).

Las filarias afectan mucho a  los primates por lo que es necesario desparasitarlos periódicamente con Ivermectina 0.2 mg/Kg. Para lombrices intestinales se tratan con vermífugos.

En la mayoría de casos se prefiere el análisis parasitológico para determinar el estado de salud de los animales, debido a lo traumático y riesgoso de la toma de muestra en las diferentes especies que necesitan en muchos de los casos ser sedados para los procedimientos

 TOMA DE MUESTRA EN AVES

CARACARA  (POLYBORUS PLANCUS)

PROTOCOLO PARA LA  TOMA DE MUESTRA EN AVES

 

La vena radial (alar), es el sitio de punción más comúnmente elegido por su facilidad; se elige una de las dos alas.

MATERIALES Y MÉTODOS

      1. Se debe proceder con cautela para  minimizarle el  estrés al ave al momennto de extraer la muestra sanguínea . Para ello se debe:

•       Uno de los aspectos más importantes es cubrir la visión del animal, evitando de esta manera que se exalte. Esto permite que el ave de mantenga tranquila durante el procedimiento.

• Luego se procede a escoger la vena más adecuada para la extracción de la  muestra, separando el ala del cuerpo del animal cuidadosamente.

 

La asepsia se realiza con  Baxidin ya que si se usa alcohol, este es fácilmente absorbido lo cual puede generar intoxicacion e irritacion de la piel en el ave.

 1. Con aguja numero 21 se hace inserción sobre la vena en un ángulo de 15°, se debe tener cuidado de no extravasar ya que la pared de la vena es muy delgada y podría ocurrir con facilidad, observándose hematoma inmediatamente, si esto no sucede se procede a extraer la muestra, aproximadamente de 1 a 2 ml de sangre en aves de mayor tamaño, y en aves más pequeñas 0,5 ml ya que una cantidad mayor puede producir anemias en esta especie.

 Otros sitios de punción menos utilizados son la vena atlantooccipital ubicada entre el atlas y la región occipital, la inserción de la aguja debe hacerse perpendicular al sitio antes mencionado. La punción intracardiaca debe realizarse con mucho cuidado ya que un error en ella, al puncionar las aurículas puede causar la muerte inmediata del animal.

 

Ojo:

La  inmovilización es de gran importancia para el éxito del procedimiento. Existen varios sitios de punción que serán elegidos de acuerdo a la experiencia del operador.

TOMA DE MUESTRA DE ANIMALES REPTILES

Chelonoidis denticulada

TAXONOMIA: El género Chelonoidis está formado por 6 especies. No se han descrito subespecies de Chelonoidis denticulata. 
 

MORFOLOGIA: Tiene un caparazón bastante alargado y un poco abombado. Es de color negro, con el centro de los escudos de color amarillo o marrón claro. El plastrón puede ser amarillo liso o con dibujos negros. La cabeza y patas son oscuras con manchas amarillas. Una diferencia importante para distinguirla de Chelonoidis carbonaria es la presencia de dos grandes escudos en la cabeza, en la zona frontal.

TAMAÑO: Suele alcanzar los 40 cm de largo, pero se han encontrado ejemplares de mas de 70 cm e incluso algún ejemplar ha superado  los 80 cm

DISTRIBUCIÓN: Tiene una amplia zona de distribución que abarca varias zonas de Brasil, Bolivia, Perú, Ecuador, Colombia, Venezuela, Guyana, Surinam.

HÁBITAT: Su hábitat acostumbra a ser bosques tropicales y subtropicales. Le gustan los ambientes con gran húmedad ambiental y bastante calor durante todo el año. No suele aparecer en zonas abiertas

ANATOMÍA

Las tortugas son reptiles, una clase de unas 6000 especies de vertebrados que tienen piel con escamas, respiran aire y usan la luz solar para calentar sus cuerpos (ectodérmicos). Las tortugas se reproducen por medio de fertilización interna como todos los reptiles  y ponen sus huevos de concha blanda en tierra.

Una característica única de la tortuga es su concha. Esta estructura esquelética es una cubierta armada protectora de los órganos vitales internos. A parte superior de la concha, el caparazón, esta cubierta con grandes estructuras como escama llamadas escudos. El caparazón está conectado con la parte ventral, llamada plastrón, por medio de placas duras de concha conocidas como puentes laterales.

La cavidad corporal de gran tamaño de las tortugas,  contiene gran masa intestinal necesaria para digerir materiales vegetales

PROTOCOLO PARA LA TOMA DE MUESTRA

Al momento de obtener la  muestra, el animal se debe tomar  de la parte posterior y se intenta extraer la cabeza del caparazón para poder tomar la muestra, la aguja se introduce através del plexo occipital 

Toma de muestra en serpiente

Lampropetis  triangulum sinaloe 

Nombre común: Serpiente de Sinaloa o falsa coral

Nombre científico: Lampropeltis triangulum sinaloe

Ubicación: Desde el centro de Mexico, al oeste de Sinaloa y al sur de Nayarit

Tamaño: Alcanzan un largo de entre 90 y 120 cm.

Características generales

Estas serpientes son muy particulares, especialmente por su patrón que imita de una serpiente coral, lo que le sirve como defensa. Viven en zonas semi – aridas, bosques y llanuras.

Distribucion: Las diferentes subespecies denominadas bajo este nombre abarcan toda América.

Habitat: Debido a su gran distribución en toda América éste género se puede encontrar en cualquier tipo de terreno. Desde bosques a praderas, de campos de cultivo a zonas deserticas. Son extremadamente adaptables.

Longevidad: Pueden llegar a vivir más de 20 años, pero lo común es que sea entre 15-18 años.

Morfologia: Hay que entender que dentro de esta especie de serpientes existen 25 subespecies con el mismo nombre (falsa coral). El genero lampropetis va desde los 50 cm hasta los 120 cm

Taxonomía:

• Reino: Animalia
• Filo: Chordata
• Subfilo: Vertebrata
• Clase: Reptilia
• Orden: Squamata
• Suborden: Serpentes
• Familia: Colubridae
• Genero: Lampropeltis
• Especie: Lampropeltis triangulu

CARACTERISTICAS

Piel: La piel de la serpiente está recubierta por escamas. La mayoría de las serpientes utilizan escamas especializadas de la parte ventral para desplazarse, aferrándose con ellas a las superficies. Sus párpados se encuentran permanentemente cerrados, pero son en realidad escamas transparentes. Las serpientes cambian de piel periódicamente. A diferencia de otros reptiles, el cambio de piel es realizado en una pieza, como si tirara de una media. Esto se hace a medida que el animal crece y además para reparar heridas y librarse de parásitos externos. 

Locomoción: La locomoción se realiza mediante ondulaciones laterales del cuerpo; las escamas ventrales ensanchadas de muchas serpientes impiden el deslizamiento. Algunas serpientes, como ciertas boas y las víboras pueden desplazarse también mediante movimientos musculares de las escamas ventrales con su cuerpo extendido casi en línea recta.

Esqueleto: El esqueleto tiene muchas vértebras, 200 en las víboras y 400 en las pitones.

El cráneo está muy modificado respecto al modelo básico diápsido. Los huesos de la mandíbula superior están débilmente unidos al resto del cráneo y el cuadrado puede moverse libremente y posee potentes músculos refractores, lo que permite una enorme abertura de las mandíbulas y la deglución de grandes presas enteras. Los dientes son agudos y curvados hacia atrás y se implantan tanto en el paladar como en el maxilar y el dentario.

Las boas y las pitones poseen rudimentos de las extremidades posteriores y de sus cinturas; en estas serpientes pueden verse unas garras en la parte externa y a cada lado de la cloaca que desempeñan un cierto papel en el coito.

Órganos internos

El aparato respiratorio y las vísceras están muy modificados ya que el cuerpo tubular de la serpiente requiere que todos los órganos sean alargados y delgados. La glotis puede proyectarse hacia adelante para mantener abierto el conducto respiratorio durante la ingestión de la presa y, en algunas especies una parte de la tráquea está especializada en la respiración, constituyendo un pulmón traqueal.

El pulmón izquierdo suele estar reducido o a veces incluso puede faltar, y las demás vísceras pares suelen situarse a diferentes niveles en cada lado. Poseen una pareja de órganos reproductores.

PROTOCOLO PARA LA TOMA DE MUESTRA

Es importante saber malipular a la serpiente por lo tanto lo primero que se debe hacer es inmovilizarla tomandola de la cabeza, para realizar éste procedimiento se requieren dos personas.

Luego de tener a la serpiente inmovilizada  se procede a tomarla de la cola, contando 10 escamas del extremo posterior se introduce la aguja de calibre 23 aproximadamente hasta el lugar donde se sienta  hueso y se procede a extraer la muestra.